Microscope Nikon Eclipse TE2000U

• Microscopie de cellules de mammifères, levures et bactéries
• Épifluorescence à champ large (lampe au mercure)
• Fond clair, DIC, contraste de phase et polarisation
• Imagerie multidimensionnelle (automatique : Z, durée)
• Imagerie avec température possible seulement avec les objectifs à longue distance de travail (4x, 20x et 40x ELWD)

• 4x/0,10 Plan
• 20x/0,40 Ph1 ADL LWD, couvre-objet 1,2 mm; WD 3,0
• 40x/0,60 Plan Fluor, Ph2, DIC M, ELWD avec une bague correctrice 0,0-2,0 mm; WD 2,7-3,7
• 40x/0,75 Plan Fluor; Ph2 DLL, 0,17 mm; WD 0,72
• 60x/1,40 Plan Apo, DIC H; 0,17 mm; WD 0,21 immersion à l’huile
• 100x/1,40 Plan Apo, DIC H; 0,17 mm; WD 0,13; immersion à l’huile

Tableau des objectifs

• Lampe au mercure (HBO 103W/2 d’Osram) pour l’épifluorescence
• Lampe halogène pour la lumière transmise

• Caméra CCD 14 bit, CoolSnap HQ2 de Photometrics : 1392×1040 pixels de 6,45 µm chacun, 11 fps
  • Refroidie à -30^oC, bruit d’intégration (Readout noise) de 4,5 e- @ 10 MHz  et 5,5 e- @ 20 MHz
• Possibilité d’ajouter une caméra sur la sortie frontale

• Cubes de filtres (à changement manuel (non motorisé), tourelle à 6 positions) :
  • DAPI (Chroma 31000): BP AT350/50x BS 400dclp   BP ET460/50m
  • CFP (Chroma 31044v2): BP D436/20x   BS 455dclp   BP D480/40m
  • GFP (Chroma 41001): BP ET480/40x  BS 505dclp    BP ET535/50m
  • EYFP (Chroma 41028): BP HQ500/20x   BS Q515lp   BP HQ535/30m
  • Cy3 (Chroma 41007): BP HQ535/50x   BS Q565lp   BP HQ610/75m
  • mCherry (Chroma 49008 ET): BP ET560/40x   BS T585lpxr   BP ET630/75m
  • Texas red (Chroma 41004): BP ET560/40x   BS Q595lp   BP HQ645/75m
  • Cy5 (Chroma 31023): BP D640/20x   BS 660dclp  BP D680/30m
  • 5 (Chroma 41022): BP HQ665/45x   BS Q695lp   BP HQ725/50m

• Déplacements en XY : platine manuelle
• Déplacements en Z : Moteur Z (Prior)

• • L’incubation entre 20-50°C est possible en utilisant la chambre de perfusion FCS2 de Bioptechs (chambre formée entre 2 lamelles de 40 mm diam.). Le chauffe-objectif est nécessaire si la chambre FCS2 est utilisée avec un objectif à immersion.

• L’autre alternative est l’utilisation de la Thermo Plate qui agit comme une platine transparente et chauffante (20-50°C).

• La micromanipulation à une pipette est possible en installant l’Injectman 5179 de Brinkmann/Eppendorf
• La femto-injection est possible en installant le Femtojet 5247 de Brinkmann/Eppendorf

• Pétri et flacons de culture de toutes grandeurs
• Lame histologique
• Plaque multi-puits
• Chambre de perfusion FCS2 de Bioptechs

• Metamorph de Molecular Devices

• Micro-manipulateur : Injectman 5179 de Brinkmann (Eppendorf)
• Femtoinjecteur : Femtojet 5247 de Brinkmann (Eppendorf)

• Thermo Plate MATS-U505R30 de Tokai Hit
  • Platine chauffante et transparente compatible avec microscopie : ambiante à 50°C +/-0,3°C
  • Épaisseur de la plaque de verre : 0,5 mm au centre (50 mm x 50 mm), 1,0 mm ailleurs
  • Compatible avec le contraste de phase, le DIC et la polarisation

• Chambre environnementale FCS2 de Bioptechs (FCS2 : Focht Live-Cell Chamber System)
  • Chambre de perfusion fermée compatible avec le DIC, la fluorescence et les objectifs à immersion
  • Micro-perfusion par un système de Microaqueduct: 0,2 – 180 ml/h
  • Échange complet du milieu possible par la pompe péristaltique en 1 sec. (max.)
  • Contrôle de la température de la chambre : ambiante – 50°C +/-0,1°C
  • Volume de la chambre : 6,6 – 706 µl selon l’épaisseur du joint de montage (50 – 1000 µm)
  • Champ visuel : 22 mm de diamètre
  • Nécessite culture sur lamelle de 40 mm de diamètre et 0,17 mm d’épaisseur
  • Chauffe-objectif compatible avec les objectifs de 26 à 35 mm de diamètre (100x à immersion)
  • Incubateur Boekel: mini-étuve portative pour garder le milieu de perfusion à la bonne température

• André Lévesque, responsable des plateformes de microscopie et d’histologie du CIB
• Nicolas Stifani, coordonnateur principal microscopie, Faculté de médecine, local 3024, pav. J.-Armand-Bombardier