MICROSCOPIE CONFOCALE
Microscope confocal inversé Olympus FV300 (monté sur le modèle IX71)
- Manuel d’instruction
- Sources lumineuses : Lasers (5 Excitations : 458, 488, 515, 543 et 633 nm)
- 3 PMT :
- 2 détecteurs en fluorescence
- détecteur en lumière transmise
- AOTF
- Moteur Z
- Objectifs disponibles théorie sur les objectifs
- Filtres disponibles à l’émission
- Suggestion de fluorophores
- FRET
- FRAP
- FRAP pour mesurer la mobilité
- Logiciel d’imagerie : Fluoview
- Feuille de travail
MICROSCOPIE À FLUORESCENCE
Microscope droit Zeiss
- Source lumineuse : lampe au mercure HBO 100 Watts
- Obturateur motorisé pour la fluorescence Uniblitz
- Moteur Z de Prior, modèle Priorscan
- Objectifs
- DIC
- Filtres en fluorescence
- Caméra CCD 12 bits monochrome : CoolSnap fx de Photometrics (div. Roper)
- Logiciel d’imagerie : Metamorph de UIC
Microscope inversé Nikon Eclipse TE2000U
- Source lumineuse : lampe au mercure HBO 100 Watts
- Obturateur motorisé pour la fluorescence Uniblitz
- Moteur Z de Prior, modèle Priorscan
- Objectifs
- Contraste de phase
- DIC
- Filtres en fluorescence
- Schéma d’un cube de filtre
- Caméra CCD 12 bits monochrome : CoolSnap fx de Photometrics (div. Roper)
- Logiciel d’imagerie : Metamorph de UIC
LIVE-CELL
Live-cell en pétri
- Micromanipulateur : Injectman 5179 d’Eppendorf
- Femto-injecteur : Femtojet 5247 d’Eppendorf
- Platine chauffante THERMOPLATE MATS-U505R30 de Tokai Hit (conçue pour les microscopes inversés seulement)
Live-cell en chambre fermée
- Chambre environnementale fermée FCS2 de Bioptechs (Perfusion à flux et à température contrôlée pour cellules vivantes)
- Contrôleur de température pour objectif 100X, de Bioptechs
ANALYSE D'IMAGES
- Logiciel d’acquisition et d’analyse d’images Metamorph de UIC
- Logiciel d’acquisition et d’analyse d’images Fluoview
- Logiciel de déconvolution 3D – Autodeblur d’Autoquant Imaging
PILE DE SECOURS FELLOW
TABLES ANTI-VIBRATION
- Newport
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